CONTROL EFICIENTE DE PARÁSITOS EN SISTEMAS DE PRODUCCIÓN SIN JAULAS
En los últimos años, el incremento de los sistemas de producción sin jaulas ha traído consigo un aumento en la presión parasitaria en las aves de corral.
- Estos sistemas, que se presentan como más beneficiosos para el bienestar animal, presentan desafíos específicos en el control de parásitos como Ascaridia galli, Heterakis gallinarum y Capillaria spp., que pueden llegar a afectar significativamente la salud y el rendimiento de las aves.
El aumento de los sistemas sin jaulas se debe a los cambios en la legislación sobre bienestar animal.
- En España, se ha propuesto la eliminación gradual del uso de jaulas en la producción avícola, con el objetivo de que en 2027 se eliminen completamente, siguiendo las recomendaciones de la Comisión Europea (Congreso de los Diputados, 2021; Comisión Europea, 2021).
Las infecciones parasitarias son más comunes en aves criadas en libertad o en sistemas de producción sin jaulas debido a su mayor exposición a ambientes contaminados.
Estos parásitos pueden llevar a una serie de problemas de salud en las aves, como pérdida de peso, disminución de la producción de huevos, y en casos graves, obstrucción intestinal y muerte.
PREVALENCIA DE PARÁSITOS EN ESPAÑA
En España, la prevalencia de parásitos en aves de corral es una preocupación creciente, especialmente en sistemas de producción alternativos.
Estudios recientes han demostrado una alta prevalencia de Ascaridia galli, Heterakis gallinarum y Capillaria spp. en explotaciones avícolas sin jaulas.
Según un estudio realizado en varias regiones de España, la prevalencia de A. galli varía entre 30% y 50%, mientras que H. gallinarum y Capillaria spp. se encuentran en un 20% a 40% de las explotaciones (Gómez-Morales et al., 2017).
Estos parásitos no solo afectan la salud de las aves, sino que también tienen un impacto económico significativo debido a la reducción en la producción de huevos y el aumento de los costos de tratamiento y manejo (Permin y Hansen, 1998).
ESTRATEGIAS DE MANEJO
Una de las estrategias más efectivas es el manejo integral del entorno.
Esto incluye la rotación de pastos, la limpieza regular de la cama de las aves y la eliminación de los cadáveres también tienen su importancia, así como el control de los excrementos, y manejo de gallinaza.
La higiene del agua y del alimento también juega un papel fundamental en la prevención de la diseminación de los parásitos (Gauly et al., 2002).
El diagnóstico temprano es clave para un control efectivo de parásitos.
Métodos como la necropsia, el recuento de huevos en heces y la detección visual de parásitos en la cama son esenciales para identificar y evaluar la carga parasitaria en las aves (Foreyt, 2001).
TRATAMIENTOS ANTIPARASITARIOS
El uso de tratamientos continuos en el agua de bebida ha demostrado ser altamente eficaz en el control de infecciones parasitarias en aves de corral.
- Entre los diversos antiparasitarios disponibles, albendazol, levamisol y fenbendazol son comúnmente utilizados en la avicultura (Foreyt, 2001).
La rotación de estas moléculas es esencial para prevenir el desarrollo de resistencia en los parásitos, asegurando así la eficacia continua de los tratamientos (Reid, 1999).
Entre estas opciones, el uso de soluciones que permiten una administración continua y homogénea a través del agua de bebida presenta ventajas significativas.
- Estas soluciones aseguran que los parásitos se expongan de manera continua al agente antiparasitario, lo que aumenta la eficacia del tratamiento.
- Además, garantizan que todas las aves reciban una dosis uniforme, reduciendo el riesgo de subdosificación y minimizando el estrés en las aves, ya que no es necesario interrumpir el suministro de agua antes del tratamiento.
EFICACIA COMPROBADA
Diversos estudios independientes han respaldado la eficacia del flubendazol en el tratamiento de parásitos en aves de corral.
- Por ejemplo, Ramadan y Abou Znada (1991) demostraron una alta eficacia del flubendazol contra Ascaridia galli en pollos, con una reducción significativa de los parásitos.
- Otro estudio realizado por Sotiraki et al. (2019) reportó resultados similares, confirmando la efectividad del tratamiento continuo con flubendazol en el agua de bebida para controlar Ascaridia galli, Heterakis gallinarum y Capillaria spp. en aves de corral.
Para garantizar la eficacia del tratamiento antiparasitario, es crucial que todas las aves del grupo reciban la dosis diaria completa del medicamento.
- Dividir la dosis diaria a lo largo de una gran parte del día es preferible a una dosis en pulso corta, en la que existe un mayor riesgo de que las aves no reciban agua de bebida medicada o muy poca en el corto período.
Los tratamientos que aseguran una homogeneidad en la distribución del medicamento en el agua de bebida permiten suficiente tiempo para que todas las aves consuman el agua medicada (Ramadan y Abou Znada, 1991).
La adopción de tratamientos continuos en el agua de bebida, combinada con una gestión ambiental adecuada, representa una solución eficaz y práctica para el control de parásitos en sistemas de producción alternativos.
- Estas estrategias no solo mejoran la salud y el bienestar de las aves, sino que también contribuyen a la sostenibilidad de la producción avícola.
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REFERENCIAS
Gauly, M., Bauer, C., & Mueller, U. (2002). Influence of an Ascaridia galli infection on the behaviour and performance of laying hens. *British Poultry Science*, 43(5), 654-661. Disponible en: [https://www.tandfonline.com/doi/abs/10.1080/0007166022000004448] (https://www.tandfonline.com/doi/abs/10.1080/0007166022000004448)
Gómez-Morales, M. A., Ludovisi, A., Amati, M., Pozio, E. (2017). Helminth infections in laying hens of different housing systems and in free-range broilers. *Preventive Veterinary Medicine*, 146, 41-48. Disponible en: [https://www.sciencedirect.com/ science/article/pii/S0167587717300524](https://www.sciencedirect.com/science/article/ pii/S0167587717300524)
McKellar, Q. A., & Benchaoui, H. A. (1996). Avermectins and milbemycins. *Journal of Veterinary Pharmacology and Therapeutics*, 19(5), 331-351. Disponible en: [https:// onlinelibrary.wiley.com/doi/abs/10.1111/j.1365-2885.1996.tb00039.x](https://onlinelibrary. wiley.com/doi/abs/10.1111/j.1365-2885.1996.tb00039.x)
Permin, A., & Hansen, J. W. (1998). Epidemiology, diagnosis and control of poultry parasites. FAO Animal Health Manual No. 4. Disponible en: [http://www.fao.org/3/ X0590E/X0590E00.htm](http://www.fao.org/3/X0590E/X0590E00.htm)
Ramadan, H. H., & Abou Znada, N. Y. (1991). The use of fenbendazole against Ascaridia galli in naturally infected chickens. *Veterinary Parasitology*, 40(1-2), 87-92. Disponible en: [https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/0304401791900502](https:// www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/0304401791900502)
Reid, W. M. (1999). The development of resistance to antiparasitic drugs. *Parasitology Today*, 15(2), 82-85. Disponible en: [https://www.sciencedirect.com/science/article/ abs/pii/S0169475898901193](https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/ S0169475898901193)
Sotiraki, S., Rallis, T., & Leontides, L. (2019). Anthelmintic efficacy of flubendazole in chicken. *Journal of Helminthology*, 93(5), 599-606. Disponible en: [https://www. cambridge.org/core/journals/journal-of-helminthology/article/anthelmintic-efficacyof-flubendazole-in-chickens/47D27467A1D17C63AD617A2A0E0A24A2](https://www. cambridge.org/core/journals/journal-of-helminthology/article/anthelmintic-efficacy-offlubendazole-in-chickens/47D27467A1D17C63AD617A2A0E0A
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