A redução ou, preferencialmente, eliminação do uso de melhoradores de desempenho com atividade antimicrobiana é uma tendência internacional, fortemente recomenda pela Organização Mundial da Saúde (OMS), devido a sua associação direta ou indireta a diversos problemas de saúde pública, humana e animal.
A eliminação completa ou diminuição do uso de antimicrobianos na indústria de proteína animal pode causar efeitos no bem-estar animal e rendimentos na produção.
Com o objetivo de mitigar estes efeitos, há interesse crescente no uso de produtos alternativos aos antimicrobianos, principalmente aqueles derivados de extratos naturais, com menor probabilidade de apresentar efeitos negativos associados aos antimicrobianos clássicos.
Neste trabalho, foram utilizados dois aditivos alimentares associados:
HERBANOPLEX® CP, que contém a combinação de extratos herbais e excipientes ativos do lúpulo e gérmen de trigo;
UNIWALL® MOS 25, composto por ácidos orgânicos (acético, fórmico e propiônico) e parede de levedura purificada (MOS e Betaglucanos).
Inseridos em uma partícula mineral protetora, tornando-os capazes de agir nos diferentes segmentos do trato intestinal das aves.
Patógenos entéricos, classicamente controlados com uso de subdoses de antimicrobianos, podem produzir toxinas que induzem lesões na barreira intestinal.
A barreira intestinal é constituída de uma monocamada contínua de células epiteliais fortemente unidas por complexos de junções intercelulares, que quando saudáveis e íntegras, previnem a translocação paracelular de compostos indesejados, incluindo grandes moléculas, toxinas e microrganismos do lúmen do intestino para a lâmina própria e posteriormente para a corrente sanguínea (Awad et al.2017). |
Desta forma, a medida da integridade da mucosa é um forte indicador da saúde intestinal em aves de produção.
MATERIAIS E MÉTODOS
Foram utilizados dois aviários com 9.000 aves cada, entre 74 e 75 semanas de idade.
O aviário Tratado recebeu inclusão de 1kg/ton de HERBANOPLEX® CP e 1,5 kg/ton de UNIWALL® MOS 25 no alimento das aves, enquanto o aviário Controle não recebeu nenhum aditivo zootécnico ou antimicrobiano.
A determinação da integridade intestinal foi realizada utilizando metodologia previamente descrita por Vicuña et al. (2015).
Primeiramente, moléculas fluorescentes grandes (FITC-dextran 4000 kDA) são administradas pela via oral nas aves e, passado o tempo necessário para trânsito intestinal (2h30min), são coletadas amostras de sangue periférico, e o soro é analisado em um leitor de fluorescência.
A existência de lesões intestinais com danos nas junções intercelulares pode permitir a passagem de moléculas tóxicas da luz intestinal para circulação sanguínea. Desta forma, lesões ou processos inflamatórios na mucosa intestinal, também permitem a passagem pela via paracelular do corante fluorescente FITC - dextran, que poderá ser detectado na corrente sanguínea e quantificado (Figura 1).
RESULTADOS
Antes do período de tratamento, na primeira coleta, não foi possível identificar diferença significativa na integridade intestinal entre os grupos Controle e Tratado (Gráfico 1).
Entretanto, após os 23 dias de tratamento combinado com HERBANOPLEX® CP e UNIWALL MOS® 25, uma segunda coleta foi realizada (44 dias depois do início do tratamento). Nesta segunda coleta, foi possível identificar aumento significativo (Teste T de Student, P < 0,05) na permeabilidade intestinal no grupo Controle (n=14), quando comparado ao grupo Tratado (n=12), conforme observado no Gráfico 2.
DISCUSSÃO
O uso de compostos naturais, como por exemplo, os extratos naturais ricos em humulonas e lupulonas, assim como, a parede de levedura (ricas em oligossacarídeos de manana – MOS) e os ácidos orgânicos, apresentam alto potencial para controle de Clostridium perfringens, Salmonella spp. e outros patógenos entéricos (Wise et al.2008, Roto et al.2015), altamente prejudiciais à saúde intestinal. |
Os principais componentes encontrados no lúpulo são os α-ácidos (Humulonas), responsáveis pelo característico sabor amargo do vegetal, e os α-ácidos (Lupulonas), qual possuem uma excelente atividade bactericida frente a bactérias Gram-positivas (Kolar et al.2018).
Por outro lado, o uso de uma associação de ácidos orgânicos e parede de levedura protegidos por um carrier mineral, atua favorecendo a multiplicação e colonização dos segmentos intestinais por bactérias acidófilas (ácido-tolerantes e produtoras de ácidos) no intestino de aves (Saeed et al.2017).
O uso associado de HERBANOPLEX® CP e UNIWALL® MOS 25 em aves apresentou um efeito significativo na proteção da integridade intestinal.
REFERÊNCIAS
AWAD, W. A., HESS, C. and HESS, M.2017. Enteric Pathogens and Their Toxin-Induced Disruption of the Intestinal Barrier through Alteration of Tight Junctions in Chickens.
KARAVOLIAS, J., SALOIS, M. J., BAKER, K. T. and WATKINS, K.2018. Raised without antibiotics: Impact on animal welfare and implications for food policy. Translational Animal Science2: 337–348.
KOLAR, M., BOSTIK, P., MIKYSKA, A., BOSTIKOVA, V., LANGOVA, K., OLSOVSKA, J., DUSEK, M. and BOGDANOVA, K.2018. Inhibitory effect of hop fractions against Gram-positive multi-resistant bacteria. A pilot study. Biomedical Papers162: 276–283.
ROTO, S. M., RUBINELLI, P. M. and RICKE, S. C.2015. An Introduction to the Avian Gut Microbiota and the Effects of Yeast-Based Prebiotic-Type Compounds as Potential Feed Additives. Frontiers in Veterinary Science2.
SAEED, M., AHMAD, F., ARAIN, M. A., EL-HACK, M. E. A., EMAM, M., BHUTTO, Z. A. and MOSHAVERI, A.2017. Use of Mannan- Oligosaccharides (MOS) As a Feed Additive in Poultry Nutrition. J. World Poult.7: 94–104.
VICUÑA, E. A., KUTTAPPAN, V. A., TELLEZ, G., HERNANDEZ-VELASCO, X., SEEBER-GALARZA, R., LATORRE, J. D., FAULKNER, O. B., WOLFENDEN, A. D., HARGIS, B. M. and BIELKE, L. R.2015. Dose titration of FITC-D for optimal measurement of enteric inflammation in broiler chicks. Poultry Science94: 1353–1359.
WISE, M. G., SMITH, R. J., SIRAGUSA, G. R., MATTHEWS, P. D., BUHR, R. J., HAAS, G. J. and DALE, N. M.2008. Antimicrobial activity of lupulone against Clostridium perfringens in the chicken intestinal tract jejunum and caecum. Journal of Antimicrobial Chemotherapy61: 853–858.
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