ระบาดวิทยาของเชื้อเมตานิวโมไวรัสและฤดูกาล

ปัจจัยการเกิดโรค

ในด้านปัจจัยที่ทำให้เกิดโรคเมตานิวโมไวรัสมีความชอบพิเศษต่อระบบทางเดินหายใจส่วนบน โดยเมื่อมีการติดเชื้อจะส่งผลกระทบต่อโพรงจมูก กล่องเสียง และหลอดลม เชื้อทำให้การเคลื่อนไหวของขนขนาดเล็ก (cilia) หยุดชะงัก หรือเกิดภาวะที่ทำให้ขนเหล่านี้ไม่สามารถทำงานได้ (ciliostasis) และอาจสูญเสียขนเหล่านี้ไปทั้งหมด (desciliation) ความเสียหายที่เกิดขึ้นจะทำให้มูกไม่สามารถถูกขจัดออกจากร่างกายได้ จึงสะสมในช่องทางและโพรงต่าง ๆ ส่งผลให้เกิดอาการหลักของโรคนี้ คือ หัวบวม

• เชื้อ aMPV ก่อให้เกิดการติดเชื้อในทางเดินหายใจอย่างรุนแรงในไก่งวง ซึ่งรู้จักกันในชื่อ Turkey Rhinotracheitis (TRT) นอกจากนี้ ในกรณีของไก่ที่ไข่ เชื้อยังสามารถทำให้การผลิตไข่ลดลงได้ และสามารถแยกเชื้อจากอัณฑะของไก่หนุ่ม ซึ่งทำให้ความอุดมสมบูรณ์ลดลงร่วมกับการติดเชื้อไวรัส Infectious Bronchitis Virus.

อาการที่พบได้บ่อย ได้แก่:

• จาม
• มีน้ำมูกและน้ำตาไหล
• ตาอักเสบ (Conjunctivitis)
• บวมที่ใต้คาง (Submandibular edema)
• บวมที่โพรงไซนัสอินฟราออร์บิตัล (Infraorbital sinus swelling)
• การแตกของผิวหนัง (Cracking)
• เสียงหายใจลำบาก (Rales)

ในไก่จะทำให้เกิดอาการบวมที่โพรงไซนัสรอบดวงตาและไซนัสอินฟราออร์บิตัล คอเอียง (torticollis) การหลงทิศทาง (disorientation) และอาการเกร็งหลัง (opisthotonos) การแสดงอาการทางคลินิกอาจพัฒนาไปสู่การเปลี่ยนสีของเยื่อบุตาเป็นสีแดงพร้อมกับบวมของต่อมสร้างน้ำตา

• ภายในเวลา 12 ถึง 24 ชั่วโมงนกจะแสดงอาการบวมใต้ผิวหนังที่บริเวณหัว โดยเริ่มจากรอบดวงตา บวมเพิ่มขึ้นไปทั่วหัวแล้วจึงขยายไปยังเนื้อเยื่อใต้คางและหลังคอ
• หลังจากสามวัน ไก่อาจแสดงอาการทางระบบประสาท เช่น อาการเบื่ออาหาร (apathy) และคอเอียง (torticollis)
• ระยะเวลาการคงอยู่ของ aMPV เพียง 4 ถึง 7 วัน ซึ่งทำให้การตรวจพบไวรัสเพื่อการวินิจฉัยโมเลกุลทำได้ยาก

การฉีดวัคซีนและความดันจากการคัดเลือก

วัคซีนจากซับไทป์ A และ B มีอยู่และทั้งสองชนิดสามารถให้การป้องกันที่มีประสิทธิภาพข้ามกันได้ดี

• อย่างไรก็ตาม ปัจจุบันยังไม่มีวัคซีนใดที่ได้รับการอนุมัติให้ใช้ในสหรัฐอเมริกา มีรายงานเกี่ยวกับการเลือกสรรจากความดันวัคซีนในช่วงสองทศวรรษที่ผ่านมา ซึ่งแสดงให้เห็นว่าการป้องกันที่มีความสามารถข้ามกันระหว่างวัคซีนทั้งสองซับไทป์นั้นได้รับการพิสูจน์ แม้ว่าจะมีโอกาสที่ไวรัสจะหลีกเลี่ยงการตอบสนองของวัคซีนได้
• ดังนั้น การฉีดวัคซีนจึงควรได้รับการเสริมด้วยมาตรการรักษาความปลอดภัยทางชีวภาพและการตรวจสอบไวรัส เพื่อให้การควบคุมเป็นไปอย่างมีระบบและมีประสิทธิภาพ นอกจากนี้ยังมีรายงานที่ขัดแย้งกันเกี่ยวกับการวิวัฒนาการของไวรัส aMPV บางการศึกษาแสดงให้เห็นว่า aMPV มีอัตราการวิวัฒนาการที่ช้ากว่าไวรัส RNA ของนกชนิดอื่น ขณะที่บางการศึกษาได้ประเมินว่ามันมีอัตราการวิวัฒนาการในระดับปกติ
• ด้วยเหตุนี้ การศึกษาและการเฝ้าระวังไวรัสจึงเป็นสิ่งสำคัญในการพัฒนาวัคซีนและกลยุทธ์ในการควบคุมโรคในอนาคต

มีรายงานที่ขัดแย้งกันเกี่ยวกับการวิวัฒนาการของ aMPV

บางการศึกษารายงานว่า aMPV เป็นไวรัสที่วิวัฒนาการช้าเมื่อเทียบกับไวรัส RNA ของนกชนิดอื่น ๆ ขณะที่บางการศึกษาประเมินว่าอัตราการวิวัฒนาการของมันอยู่ในช่วงปกติ

• อย่างไรก็ตาม การวิวัฒนาการของไวรัสขึ้นอยู่กับทั้งความดันที่เกิดจากโปรแกรมการฉีดวัคซีนและประเภทของโฮสต์และสิ่งแวดล้อม ดังนั้น หลายสายพันธุ์ของซับไทป์เดียวกันสามารถหมุนเวียนในลักษณะทางฟีโนไทป์ในพื้นที่ต่าง ๆ ของโลก
• ความหลากหลายทางพันธุกรรมในลำดับที่ศึกษาได้เน้นย้ำถึงความจำเป็นเร่งด่วนในการทำการถอดรหัสพันธุกรรมทั้งหมดของไวรัสนี้เพื่อทำความเข้าใจเกี่ยวกับตัวแปรที่หมุนเวียนในสนามและวิวัฒนาการของไวรัสนี้ในช่วงเวลาต่อไป

ความสัมพันธ์ทางฟีโลเจนีติกของเชื้อ aMPV-B ได้รับการศึกษาโดยใช้วิธีการหาค่าสูงสุดของความน่าจะเป็น (Maximum Likelihood) ผ่านซอฟต์แวร์ Molecular Evolutionary Genetics Analysis (MEGA X) ซึ่งผลการวิเคราะห์แสดงให้เห็นว่า aMPV-B มีวิวัฒนาการเกิดขึ้นในยุโรปตั้งแต่การปรากฏตัวครั้งแรก

• จากการวิเคราะห์ไวรัส aMPV-B พบว่าประมาณ 40% ของตัวอย่างมีต้นกำเนิดจากวัคซีน โดยมีความคล้ายคลึงทางฟีโลเจนีติกและแสดงความคล้ายคลึงของนิวคลีโอไทด์สูงกับสายพันธุ์วัคซีนเชิงพาณิชย์ที่ได้รับอนุญาตในยุโรป
• ในขณะที่ส่วนที่เหลืออีก 60% ถือเป็นสายพันธุ์จากสนาม (field strains) เนื่องจากพวกมันแยกกลุ่มออกจากกันและแสดงความคล้ายคลึงของนิวคลีโอไทด์ต่ำเมื่อเปรียบเทียบกับวัคซีนและสายพันธุ์ที่มาจากวัคซีน ในทางตรงกันข้ามกับสายพันธุ์ที่มาจากวัคซีน สายพันธุ์จากสนามมักจะมีรูปแบบการรวมกลุ่มตามแหล่งที่มาทางภูมิศาสตร์

การทดสอบการวินิจฉัยและการค้นพบสายพันธุ์ไวรัสใหม่

ผู้เชี่ยวชาญทุกคนแนะนำให้ทำการตรวจสอบนกโดยใช้เซอโรโลยีเพื่อตรวจหาภูมิคุ้มกันด้วยการทดสอบ ELISA และตรวจหาไวรัสเพื่อระบุอัตราการระบาดของซับไทป์และกำหนดวัคซีนที่ดีที่สุดในการใช้

ชุดทดสอบ ELISA เชิงพาณิชย์ที่มีจำหน่าย ได้แก่:

• Idexx Avian Pneumovirus antibody test kit เพื่อตรวจหาซับไทป์ A, B และ C
• BioChek Avian rhinotracheitis (ART) antibody test kit เพื่อตรวจหาซับไทป์ A และ V

สามารถตรวจพบซับไทป์ของ AMPV A, B, C และ D โดยการทดสอบ PCR แบบเรียลไทม์ดั้งเดิม หรือ RT-qPCR อย่างไรก็ตาม การแยกไวรัสและการถอดรหัสพันธุกรรมในบริเวณยีน G อาจจำเป็นเพื่อระบุซับไทป์

• การลำดับพันธุกรรมของ aMPV และการแยกแยะระหว่างวัคซีนและสายพันธุ์จากสนามผ่านการวิเคราะห์ลำดับยีน G อาจเป็นเครื่องมือที่มีค่าสำหรับการวินิจฉัยที่ถูกต้อง
• ควรใช้เครื่องมือเหล่านี้อย่างสม่ำเสมอเพื่อปรับกลยุทธ์การควบคุมให้มีประสิทธิภาพยิ่งขึ้น

ตัวอย่างที่ใช้ในการวิเคราะห์ ได้แก่ การเช็ดตัวอย่างจากช่องปากและคอ, จมูก, และโพรงไซนัส ซึ่งควรส่งในสื่อขนส่ง ตัวอย่างจากจมูกเป็นแหล่งตัวอย่างที่เชื่อถือได้ที่สุดสำหรับการวินิจฉัยโมเลกุลของ aMPV ในกรณีที่นกไม่มีอาการ โดยช่องคอและหลอดลมจะเป็นทางเลือกรอง ในกรณีนกที่มีอาการจะสามารถตรวจพบไวรัสได้จากช่องคอ, จมูก และหลอดลม

การรักษาห่วงโซ่ความเย็นจากจุดที่เก็บตัวอย่างจนถึงการขนส่งไปยังห้องปฏิบัติการวินิจฉัยนั้นเป็นสิ่งสำคัญมาก
หากการขนส่งอาจใช้เวลามากกว่า 24 ชั่วโมง ตัวอย่างควรถูกแช่แข็งที่ -80°C และส่งแบบด่วนโดยใช้ถ่านแห้ง (dry ice)

การควบคุม aMPV ต้องการการระบุตัวการที่ถูกต้อง, การเฝ้าระวังทางระบาดวิทยา, การวินิจฉัยที่มีประสิทธิภาพ, โปรแกรมการป้องกันด้วยภูมิคุ้มกันที่เพียงพอ และการรักษาความปลอดภัยทางชีวภาพที่ต่อเนื่อง

A

B

รูปที่ 1. (A) ไก่งวงแสดงอาการบวมที่ไซนัสอินฟราออร์บิตัล, น้ำตาไหล และตาอักเสบ (ขอบคุณจาก ดร. Ashley Mason); (B) ไก่อายุห้าสัปดาห์แสดงอาการบวมที่หัว, บวมที่ไซนัสอินฟราออร์บิตัล, รูจมูกอุดตัน และน้ำตาไหลที่มีคราบขุ่น (ขอบคุณจาก ดร.  William McRee). แหล่งที่มา: Luqman et al., 2024. Viruses 16 (4): 508.