Salud Intestinal

Coccidiosis en pollos de engorde: consideraciones clave para un control eficaz

La coccidiosis aviar continúa siendo una de las enfermedades de mayor impacto económico en la producción de pollos de engorde. La monitorización de la infección subclínica, la rotación de anticoccidiales y una correcta gestión de las resistencias son claves para mantener el rendimiento y la salud intestinal.

Coccidiosis en pollos de engorde: consideraciones clave para un control eficaz

Aunque los coccidios que afectan a las aves de corral se identificaron hace más de 130 años, la coccidiosis sigue siendo una de las enfermedades avícolas de mayor importancia económica, con un coste estimado que supera los 10.400 millones de libras esterlinas al año (Blake et al., 2020), equivalente a aproximadamente 11.600 millones de euros.

Está causada por protozoos intracelulares del género Eimeria, que invaden y dañan las células epiteliales intestinales.

El daño intestinal provoca inflamación, una menor absorción de nutrientes y un rendimiento comprometido.

Además de alterar la función de barrera intestinal, la coccidiosis es el factor predisponente más habitual para otros trastornos intestinales, como la enteritis necrótica o la disbacteriosis.

En los casos clínicos se observan diarrea hemorrágica (heces con sangre), deshidratación, plumaje erizado, postura atípica y vocalización anómala.
  • En estos casos puede producirse un aumento de la mortalidad, habitualmente en el rango del 1-5%.

En los no hay signos clínicos especícos, pero sí un rendimiento claramente comprometido: menor ganancia de peso y mayor índice de conversión (IC).

 

 

Cabe subrayar que la coccidiosis clínica es solo la punta del iceberg, y que la mayoría de las pérdidas por coccidiosis (hasta un 80% a nivel mundial) se deben a la coccidiosis subclínica (Blake et al., 2020).

Un seguimiento específico es fundamental para el éxito de cualquier programa de control de la coccidiosis.

Debe monitorizarse la incidencia y la evolución no solo de la coccidiosis clínica, sino sobre todo de la subclínica, en la explotación de pollos de engorde, con el fin de respaldar la selección y optimización de las estrategias de prevención.

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  • No basta con registrar los brotes clínicos, ya que estos representan solo la punta del iceberg; también debe evaluarse periódicamente la incidencia de la coccidiosis subclínica.
Para ello, conviene realizar sesiones de valoración de lesiones (lesion scoring) de forma regular, preferiblemente mensual, sobre una muestra representativa de las explotaciones.

La gravedad de las lesiones está muy bien correlacionada con el daño histológico y, por tanto, con la afectación de la absorción de nutrientes y del rendimiento, por lo que constituye un buen indicador de la incidencia y gravedad de la infección subclínica.

  • Los anticoccidiales administrados en el pienso se utilizan desde hace más de 70 años, y su empleo ha sido uno de los factores que ha permitido el desarrollo de la producción avícola industrial tal y como la conocemos hoy.
Aun así, siguen siendo la herramienta de prevención de la coccidiosis más utilizada, presente en alrededor del 85% de los pollos de engorde a nivel mundial (Noack et al., 2019).

Se trata de distintos compuestos químicos clasificados como ionóforos, sintéticos o químicos, y productos combinados, con actividad coccidiocida o coccidiostática (Tabla 1).

  • Se emplean ampliamente como parte de los programas de prevención de la coccidiosis y han demostrado eficacia frente a la enfermedad cuando se usan conforme a las condiciones de uso autorizadas.
Los anticoccidiales se han adoptado ampliamente en los sistemas de producción avícola comercial.
  • Su incorporación al pienso permite la administración a nivel de toda el lote mediante las prácticas de alimentación habituales, como parte de los programas de prevención de la coccidiosis.

Cuando se utilizan conforme a las condiciones de uso autorizadas, los anticoccidiales desempeñan un papel importante en las estrategias de prevención.

Tabla 1: Productos anticoccidiales registrados para su uso en pollos de engorde en el Reino Unido y la UE.

 

No obstante, también presentan limitaciones, siendo la más importante el posible desarrollo de resistencias y de resistencia cruzada entre distintos compuestos.
La resistencia puede desarrollarse con el tiempo como resultado de la presión de selección ejercida por el uso continuado de anticoccidiales.

Para ayudar a mantener la ecacia de los programas anticoccidiales y reducir el riesgo de desarrollo de resistencias, deben considerarse estrategias adecuadas de gestión de la resistencia.

En este sentido, debe minimizarse la duración de la exposición de la población de Eimeria a una molécula determinada. Dicho de otro modo, debe practicarse la rotación (Peek y Landman, 2011).

El diseño de los programas anticoccidiales requiere tener en cuenta múltiples factores, entre ellos el historial de la granja, la presión local de coccidiosis, el uso previo de productos, los resultados del seguimiento y los principios de gestión de la resistencia.

1-La primera regla es tener en cuenta el desarrollo de resistencias y no utilizar un mismo producto durante demasiado tiempo, con el fin de maximizar el efecto de cada fármaco, pero también de preservar su eficacia de cara al futuro,

ya que no se ha lanzado ninguna molécula nueva al mercado desde 1991 y las herramientas disponibles son limitadas.

En este sentido, debe tenerse en cuenta el ritmo de desarrollo de resistencias, que varía según el producto:

Los productos que no permiten la excreción de ooquistes (“leakage”) o que la suprimen de forma significativa, como diclazuril, decoquinato, robenidina o halofuginona (Chapman, 1999), tienden a desarrollar resistencias muy rápidamente o rápidamente (Chapman, 1997), por lo que deben utilizarse durante periodos cortos:

Un máximo de 1 ciclo de producción en programa completo, o de 2 ciclos en programa “shuttle”.

Los productos que permiten cierta excreción de ooquistes (“leakage”), como los ionóforos, la nicarbazina o las combinaciones de los anteriores, desarrollan resistencias a un ritmo más lento (Chapman, 1997). Por lo que pueden utilizarse durante periodos más largos (2-4 ciclos), aunque debe monitorizarse la incidencia de coccidiosis subclínica.

2-La segunda regla es realizar siempre la rotación en función de la clase química de los productos, con el fin de evitar la resistencia cruzada entre moléculas similares (Tabla 1).

Si se cambia de un inóforo monovalente, por ejemplo narasina, a otro monovalente como salinomicina o monensina, la eficacia del programa podría verse comprometida debido a la resistencia cruzada entre ellos.

  • Para maximizar la eficacia, puede ser útil cambiar a una clase química diferente, por ejemplo de monovalente a glucósido, a divalente o a un producto químico.
Cabe señalar que los distintos productos sintéticos o químicos pertenecen a familias químicas diferentes y no presentan resistencia cruzada entre ellos.

3-La tercera regla — la restauración de la sensibilidad a los anticoccidiales es una consideración importante en la gestión de la resistencia a estos.

  • La literatura publicada y la experiencia de campo sugieren que reducir la presión de selección, evitando el uso prolongado o repetido de la misma clase de anticoccidiales, puede ayudar a mantener la sensibilidad a lo largo del tiempo.

En este sentido, tras utilizar, por ejemplo, salinomicina —un ionóforo monovalente—, debe evitarse el uso de cualquier otro ionóforo monovalente (es decir, salinomicina, pero también narasina y monensina) durante el mayor tiempo posible.

En este periodo pueden emplearse ionóforos glucosídicos o divalentes (Semduramicina y Lasalocid respectivamente), así como distintos productos químicos.

Para los grupos de ionóforos, el periodo de descanso debe ser de al menos 6 meses, y para los productos químicos —especialmente aquellos que desarrollan resistencias de forma rápida o muy rápida— de 12 o, mejor aún, 24 meses.

Por último, puede considerarse, una vez al año, una “limpieza química” con productos que no permiten la excreción de ooquistes (“leakage”) o que la suprimen de forma significativa, como diclazuril, decoquinato, robenidina o halofuginona (Chapman, 1999), con el fin de reducir la presión de infección por Eimeria

PERÍODOS DE DESCANSO

Además, las aves no deben quedarse sin anticoccidiales durante más de 5-7 días antes del sacrificio, para reducir la reinfección tardía por Eimeria y, con ello, la acumulación de presión de infección, así como la aparición de coccidiosis subclínica, que puede ser muy perjudicial para el índice de conversión.

PUNTOS BÁSICOS E IMPORTANTES EN UN PROGRAMA ANTICOCCIDIAL BIEN DISEÑADO

No utilizar un mismo producto durante demasiado tiempo.

Tener en cuenta la velocidad de desarrollo de resistencias de cada producto.

  • Ionóforos en programa completo, combinaciones nicarbazina-ionóforo o programas shuttle con combinaciones de ionóforos: de cuatro a seis meses.
  • Otros productos químicos: de dos a tres meses en programa completo, o de tres a cuatro meses en programa shuttle.

Rotar entre distintas clases, no entre productos o moléculas de la misma clase.

Tras cada periodo de uso, conceder un periodo de descanso suciente a la clase utilizada y evitar el uso de cualquier otra molécula de la misma clase. I

  • onóforos (todos los productos de una misma clase): al menos seis meses.
  • Productos químicos: al menos 12 meses (preferiblemente 24 meses para productos con un desarrollo de resistencias rápido o muy rápido).

Considerar una limpieza química y el uso de vacunas para restaurar la sensibilidad frente a los anticoccidiales

No dejar a las aves sin tratamiento anticoccidial durante más de cinco días (máximo siete días).

  • Respetar estrictamente las dosis registradas y seguir los periodos de retirada establecidos. Si existe un rango de dosis autorizado, tener en cuenta la presión de infección a la hora de seleccionar la dosis adecuada.

 

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