Introducción
Javier Sanz Corella Introducción
DVM Corporate Group Product Manager
Poultry Business Unit, HIPRA.
Durante los últimos años la diseminación de la enfermedad y la aparición más frecuente de cuadros clínicos de SHS en pollos de engorde ha motivado la introducción de programas de control en empresas destinadas a este tipo de producción. Este hecho ha motivado el interés en los seguimientos de los lotes vacunados, desde un punto de vista de los resultados zootécnicos y desde un punto de vista laboratorial.
En este artículo de revisión hablaremos de la patogenia, cuadros clínicos, diagnóstico en pollos de engorde, así como programas de control y resultados esperados de la utilización de vacunas vivas (especialmente con la subtipo B, cepa 1062) en pollos de engorde.
Patogenia del aMPV
La transmisión es horizontal, por contacto directo o indirecto con partículas eliminadas en aerosol por las aves enfermas (Jones et al., 1986; Cook et al., 1991; Panigrahy et al., 2000; Alkhalaf et al., 2002). La seroprevalencia en aves de producción es alta, aunque en pollos no siempre vaya acompañada de síntomas clínicos (O’Brien, 1985; Hafez & Löhren, 1990; Owoade et al., 2006).
En pollos de engorde el metapneumovirus aviar se replica en tracto respiratorio superior en aves de cualquier edad desde el momento del nacimiento (Hafez, 1993; Cook, 2000a).
El aMPV se replica en las células de los epitelios ciliados de los cornetes nasales y tráquea, provocando una deformación y pérdida de los cilios en estas áreas lo cual facilita una mayor penetración de agentes secundarios (Majó et al., 1996) que complican y agravan el proceso patológico. 24 horas post infección podemos detectar el virus en la cavidad nasal y tráquea, donde la máxima cantidad de virus se obtiene entre los 3 y los 6 días post infección (dpi).
Síndrome de cabeza hinchada en pollos de 40 días
El virus puede ser aislado de la cavidad nasal hasta los 14 días post inoculación, mientras que si utilizamos PCR puede ser detectado hasta los 17 días post inoculación (Jing et al., 1993).
Sólo se ha identificado un único serotipo, si bien se han diferenciado 4 subtipos mediante el análisis de la secuencia nucleotídica de la proteína de unión (G) (Juhasz & Easton, 1994) y mediante pruebas de neutralización con anticuerpos monoclonales (Collins et al., 1993; Cook et al., 1993).
Se ha observado protección clínica cruzada entre vacunas vivas y virus de desafío pertenecientes a los subgrupos A o B (Cook et al., 1993b; Velayudhan et al., 2005; Worthington et al., 2003), si bien la eficacia de las vacunas vivas parece estar relacionada con su capacidad de replicación y persistencia en los tejidos del tracto respiratorio superior.
Naylor et al. (1997), demostraron cómo la exposición a un virus subtipo B sin atenuar evitó la sintomatología producida cuando se desafío posteriormente con subtipo A, sin embargo, la misma experiencia con un subtipo A y posteriormente desafiado a un subtipo B, 2 de los 11 animales del estudio no mostraron protección. Estos resultados concuerdan con los de Eterradosi et al. (1995). Asumiendo de esta manera una mejor inmunización con cepas subtipo B que con las cepas subtipo A utilizadas por Naylor et al. (1997).
En pollos, existen claros indicios que sugieren que el aMPV es uno de los agentes etiológicos del SHS.
Este síndrome se caracteriza por una enfermedad respiratoria, apatía, hinchazón de los senos infraorbitarios e hinchazón periorbitaria unilateral o bilateral y facial, que se extiende por toda la cabeza. A estos signos les puede seguir con poca frecuencia en pollos de engorde la desorientación cerebral, tortícolis y opistótonos. Aunque la mortalidad no suele sobrepasar el 1–2%, la morbilidad puede alcanzar el 10% (Gough et al., 1994; Morley & Thompson, 1984; O'Brien, 1985; Pattison et al., 1989; Picault et al., 1987; Tanaka et al., 1995).
Cuadro clínico del aMPV
En cuanto a la aparición de los signos clínicos se caracteriza por un cuadro respiratorio, entre los 20 y los 35 días de edad, generalmente limitado al tracto respiratorio superior (tráquea y cornetes nasales).
Estos síntomas se pueden caracterizar por estornudos, tos, descarga nasal, conjuntivitis y senos edematosos.
La infección causada por aMPV favorece el establecimiento y manifestación de infecciones respiratorias secundarias, como se ha demostrado con varios patógenos respiratorios (Naylor et al., 1992; Van de Zande et al., 2001; Marien et al., 2005; Van Loock et al., 2006). Así pues, el cuadro clínico clásico se puede ver complicado con infecciones bacterianas secundarias, habitualmente, E. coli, O. rhinotracheale… etc., suponiendo un agravamiento del cuadro clínico y una gran pérdida económica, debido al incremento del gasto en tratamientos y al empeoramiento de los índices productivos (índice de conversión, mortalidad, peso medio).
Las infecciones secundarias y las condiciones de manejo inapropiadas son determinantes en la gravedad de los signos clínicos sobre todo cuando se presenta patología en broilers.
En todas las aves de producción, el estrés productivo supone un factor desencadenante de la mayoría de los cuadros clínicos, principalmente el engorde a alta densidad, que supone momentos de alta relación de kg pollo vivo/m2 galpón, siendo más complicado el mantenimiento de condiciones ambientales óptimas.
Diagnóstico del aMPV en pollo de engorde
El diagnóstico basado en el cuadro clínico no es 100% fiable, solo puede ser utilizado como una guía de aproximación al diagnóstico diferencial, este diagnóstico diferencial deberá incluir una gran cantidad de enfermedades respiratorias víricas (enfermedad de Newcastle, bronquitis infecciosa, incluso influenza de baja patogenicidad (LPAI)…etc), bacterianas (Mycoplasma gallisepticum, Mycoplasma synoviae, Avibacterium paragallinarum… etc.), así como problemas de manejo ambiental.
El diagnóstico definitivo deberá alcanzarse mediante la interpretación de los resultados de pruebas laboratoriales, principalmente serología y diagnóstico molecular, si bien el diagnóstico molecular tiene limitaciones debido al breve periodo en el que podemos localizar el virus en el tejido y la baja sintomatología que pueden manifestar durante estos momentos (Baxter-Jones & Jones, 1989; Alexander, 1991; Majó et al., 1995), siendo la mejor opción en nuestra opinión trabajar simultáneamente con ambas técnicas.
Síndrome de cabeza hinchada en pollos de 40 días
El diagnóstico en pollos de engorde debería seguir las siguientes recomendaciones:
Sólo utilizando ELISA:
Utilizando ELISA y diagnóstico molecular (PCR):
Método de control del aMPV en pollo de engorde
En pollos de engorde donde el principal problema a resolver en los brotes clínicos de aMPV son los síntomas respiratorios, las vacunas de elección para este fin son las vacunas vivas.
La utilización de vacunas inactivadas frente a aMPV en pollos de engorde no está recomendada por varias razones:
Dado que buscamos una buena inmunidad local en los tejidos diana, nuestra posición en cuanto a la vía de aplicación de las vacunas es siempre optar por vías de vacunación directas sobre el tejido diana de infección, en este caso el tracto respiratorio superior, por gota ocular o espray de gota gruesa.
Ganapathy et al (2010) sin embargo, confirmaron la eficacia de la vacunación frente a un desafío en laboratorio por diferentes métodos de vacunación, gota ocular, espray de gota gruesa o agua de bebida, aunque en este caso en particular la prueba se realizó únicamente con una cepa vacunal por lo que no conocemos el comportamiento de todas las vacunas.
Traqueitis pollo de engorde 43 días
Se ha observado que las vacunas del aMPV no interfieren con las vacunas contra la enfermedad Newcastle (ND) en gallinas specific pathogen free (SPF) (Ganapathy et al., 2005; Ganapathy et al., 2007), y cuando se aplican conjuntamente con vacunas de tipo Mass frente a la bronquitis infecciosa (IB), si se observa una replicación mas tardía de los virus vacunales de aMPV (Cook et al. 2001) que no afecta al grado de protección generado. (Cook et al., 2001; Tarpey et al., 2007; S. Corella et al., 2015a; Awad et al., 2015).
En países con utilización extendida de vacunas frente IB variantes, no se conoce cuál puede ser el impacto de estas cepas de IB con respecto a la replicación de los virus vacunales existentes de aMPV.
Los programas vacunales más habituales y eficaces realizados en pollos de engorde son aquellos en los que se utilizan vacunas vivas aplicadas por vías respiratoria (gota ocular o espray de gota gruesa) entre los días 0 y 7 de vida. Estos programas se deben instaurar dentro de una situación de mejoría de la limpieza y bioseguridad (buenas limpieza y desinfección, trabajar con todo dentro-todo fuera, cumplir periodos de vacío sanitario…etc).
Resultados de utilización de cepa 1062 para el control de aMPV en pollos de engorde
Habitualmente las vacunas vivas frente a otras enfermedades como ND siempre se han evaluado en base a la seroconversión obtenida en ELISA, en este caso la protección frente la enfermedad de ND necesita que se produzca esta seroconversión, ya que se trata de un virus con capacidad de invadir diferentes tejidos del organismo, el aMPV en pollos de engorde tiene sólo un tejido diana en el que causar un daño señalable, es el epitelio ciliado del tracto respiratorio superior, por lo que no es esencial tener una inmunidad de Ig Y fuerte para tener una buena eficacia, tal y como demuestran Ganapathy y Jones, (2007) en un prueba realizada con gallinas SPF vacunadas al día de vida con 2 vacunas subtipo B de diferentes fabricantes, y desafiados a los 21 y 49 días de edad, los dos grupos vacunados mostraron protección sin diferencias significativas en términos de evitar los signos clínicos, aunque sí existió diferencia significativa en lo títulos medios detectados por un kit ELISA (BioChek, Gouda, Holland) antes y después del desafío.
Síndrome de cabeza hinchada en pollos de 35 días
Los resultados de protección fueron similares a los detectados por S. Corella et al. (2015b) en la que se compararon 2 vacunas subtipo B esta vez con un kit ELISA CIVTEST TRT (Hipra, Amer, Spain). Con la cepa vacunal subtipo B cepa 1062 tenemos la posibilidad de obtener protección con la posibilidad de diferenciar lotes vacunados con buena protección (título medio ELISA <196) de lotes no vacunados desafiados (título medio ELISA >1000) y lotes vacunados con mala protección (título medio ELISA >5000), este hecho puede suponer una ventaja a la hora de monitorizar lotes (S. Corella et al., 2015b) y adecuar los programas vacunales según las necesidades de cada compañía.
De hecho el OIE Terrestrial Manual (2009) no establece como método para evaluación de la eficacia de las vacunas vivas frente a aMPV ningún método basado en evaluación serológica por ELISA.
En cualquier caso, y una vez asumido el comportamiento de la cepa vacunal utilizada, lo más importante a la hora de elegir una vacuna viva en pollos de engorde es una óptima y rápida eficacia en lotes vacunados, la forma más objetiva de evaluar el éxito de programas vacunales son los resultados zootécnicos comparando vacunados y no vacunados.
Conclusiones
Hoy en día la producción de pollo de engorde debe tener controlados todos los factores que actúan sobre el rendimiento productivo y económico, es por esto, que enfermedades como el aMPV están ahora incluidas dentro de los programas de vacunación de numerosas compañías alrededor del mundo.
La utilización de vacunas vivas ha demostrado tener una buena eficacia y ser capaz de solventar problemas en periodos muy cortos de tiempo.
Como veterinarios responsables de producción nuestra obligación es conocer todo lo relacionado con el agente causal del aMPV, así como las características de los productos que podemos utilizar para su control.
Este artículo ha tenido como objetivo explicar las bases del control del aMPV en pollo de engorde desde un punto técnico y justificado en base a los conocimientos de que disponemos tanto de la vacuna subtipo B, cepa 1062, como del aMPV.
Referencias
Se enviará a quienes la soliciten.
Suscribete ahora a la revista técnica de avicultura
AUTORES
Bruno Machado y Eduardo Romanini Especialistas en Incubación Investigación y Desarrollo de Petersime
SEGUIR
Dr. Marta Jaramillo Médico Veterinario MSc - Doctor en Ciencias Agrícolas Micotoxicología – Nutrición – Investigación Asesor Internacional Independiente
SEGUIRDra. Silvina Pinto- MV. PhD y docente de la Facultad de Veterinaria en la Universidad de Buenos Aires
SEGUIRM.V. Letícia Tonoli Braga - Gerente Técnica de Ventas Experta en Avicultura/DSM Productos Nutricionales S/A
SEGUIRRicardo Martín Responsable comercial y técnico de BioDevices & Automation Europa del Sur en Zoetis
SEGUIR
Equipo Técnico Petersime
Petersime tiene una amplia experiencia en sistemas HVAC a medida para plantas de incubación en los climas más variados.
MVZ. Leopoldo Paasch
En esta segunda parte del artículo continuamos revisando las múltiples aportaciones de la patología aviar al avance de la medicina.
Eduardo Souza
La selección genética es vital para lograr equilibrio en productividad, bienestar animal y sostenibilidad medio ambiental...
José Guilherme Morschel Barbosa
Los escenarios de mercado para las empresas productoras de aves en el mercado de alimentos balanceados han sido desafiantes en los últimos años, tras la volatilidad significativa de los precios.
Ing. Jorge Robles
La gestión integral en una Empresa productora de pollo de engorde, dependiendo de su naturaleza, puede tener varios objetivos prioritarios para su desarrollo y permanencia en el tiempo; sin embargo, en este caso puntual, nos enfocaremos, en el aspecto de la Rentabilidad Sostenible.
Dr. Ricardo Rauber
El mecanismo acción de Antibióticos Promotores de Crecimiento (APC) se ha aclarado recién en las últimas 2 décadas, presentando un desafío para el sistema de producción, proveedores e investigadores en búsqueda de posibles sustitutos.
Renata Steffen
Los datos del análisis de la embriodiagnosis generan los datos de incubabilidad que nos permiten mejorar la productividad de la planta de incubación.
Juan José Garay Portilla
La productividad de un lote de reproductoras pesadas se mide por el número de pollitos producidos de primera, sanos y al menor costo posible, por gallina alojada. En esta oportunidad nos vamos a centrar en la fertilidad, y revisaremos aspectos relacionados a esta variable, a fin de exponer oportunidades de mejora.
Equipo Avinews
En el caso de una infección en la producción avícola, Salmonella puede causar una enfermedad clínica o una infección subclínica, lo que da como resultado animales asintomáticos que muchas veces son indicados como portadores
Michael Czarick
Aunque los pollos de engorde a menudo parecen estar distribuidos uniformemente por todo el galpón, la mayoría de las veces nuestros ojos nos engañan.
Eduardo Cervantes López
En las empresas procesadoras existen procedimientos con distintos niveles de detalles para reglamentar y monitorear la seguridad integral en el trabajo. Sin embargo, en algunas compañías la realidad cotidiana es otra.
Juan Kútulas
En esta publicación se abordan los puntos más neurálgicos del sector productivo de huevos de Latinoamérica, considerando que el huevo sigue siendo una proteína accesible, económica y versátil.
